Маркеры онкологического прогноза при хирургическом лечении плоскоклеточного рака полости рта

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

   На прогрессирование опухолевого процесса при опухолях головы и шеи могут оказывать влияние характеристики локального и системного иммунного ответа, в том числе особенности развития системной воспалительной реакции при хирургических вмешательствах. Продемонстрирована зависимость прогноза пациентов со злокачественными новообразованиями от предоперационного общесоматического статуса и характера послеооперационных осложнений именно с учетом развития системной воспалительной реакции, провоцирующей рецидивирование и прогрессирование опухолевого процесса. Для выбора верной стратегии лечения больных раком полости рта необходимо изучить взаимодействие типичной воспалительной реакции и особенностей репаративных процессов в условиях онкологического процесса. Установлено, что хронизация воспалительной реакции, связанная с м2-поляризацией макрофагов, способствует прогрессированию опухолевого процесса, причем степень системного воспаления коррелирует с результатами лечения. Также необходимо выявлять факторы развития послеоперационных осложнений, влияющих на хронизацию воспаления. К ним могут относиться общесоматический статус и нутритивный статус пациентов, сопутствующие заболевания и индексы системного воспаления. Очевидно, что на улучшение результатов хирургического лечения больных раком полости рта при этих условиях способны повлиять различные способы управления воспалительной реакцией, в том числе особенности выполнения реконструктивно-пластического этапа, улучшение предоперационного общесоматического и нутритивного статусов.

Об авторах

А. И. Стукань

ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Минздрава России; ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: jolie86@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-0698-7710

Анастасия Игоревна Стукань

350063; ул. Митрофана Седина, 4; 197758; ул. Ленинградская, 68; Краснодар; Санкт-Петербург; Песочный

Россия

Д. Е. Кульбакин

Научно-исследовательский институт онкологии ФГБНУ «Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук»

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-3089-5047

634009; пер. Кооперативный, 5; Томск

Россия

Т. Ю. Семиглазова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И. И. Мечникова» Минздрава России

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-4305-6691

197758; ул. Ленинградская, 68; 191015; ул. Кирочная, 41; Санкт-Петербург; Песочный

Россия

Я. В. Швейковская

ГБУЗ «Клинический онкологический диспансер № 1» Минздрава Краснодарского края

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-6882-3896

350040; ул. Димитрова, 146; Краснодар

Россия

Е. А. Нефедова

ГБУЗ «Клинический онкологический диспансер № 1» Минздрава Краснодарского края

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-5035-4486

350040; ул. Димитрова, 146; Краснодар

Россия

И. И. Асеева

ГБУЗ «Клинический онкологический диспансер № 1» Минздрава Краснодарского края

Email: fake@neicon.ru

350040; ул. Димитрова, 146; Краснодар

Россия

Список литературы

  1. Cho S.K., Mattke S., Gordon H. et al. Development of a model to predict healing of chronic wounds within 12 weeks. Adv Wound Care (New Rochelle) 2020;9(9):516–24. doi: 10.1089/wound.2019.1091
  2. Chen L., Arbieva Z.H., Guo S. et al. Positional differences in the wound transcriptome of skin and oral mucosa. BMC Genomics 2010;11:471. doi: 10.1186/1471-2164-11-471
  3. Turabelidze A., Guo S., Chunget Y.A. et al. Intrinsic differences between oral and skin keratinocytes. PLOS One 2014;9(9):e101480. doi: 10.1371/journal.pone.0101480
  4. Toma A.I., Fuller J.M., Willettet N.J. et al. Oral wound healing models and emerging regenerative therapies. Transl Res 2021;236:17–34. doi: 10.1016/j.trsl.2021.06.003
  5. Politis P., Schoenaers J., Jacobs R. et al. Wound healing problems in the mouth. Front Physiol 2016;7:507. doi: 10.3389/fphys.2016.00507
  6. Funato N., Moriyama K., Baba Y. et al. Evidence for apoptosis induction in myofibroblasts during palatal mucoperiosteal repair. J Dent Res 1999;78(9):1511–7. doi: 10.1177/00220345990780090501
  7. Eming S.A., Hammerschmidt M., Krieg T. et al. Interrelation of immunity and tissue repair or regeneration. Semin Cell Dev Biol 2009;20:517–27. doi: 10.1016/j.semcdb.2009.04.009
  8. Des Jardins-Park H., Mascharak Sh., Chinta M.S. et al. The spectrum of scarring in craniofacial wound repair. Front Physiol 2019;10:322. doi: 10.3389/fphys.2019.00322
  9. Boscolo-Rizzo P., D’Alessandro A., Polesel J. et al. Different infammatory blood markers correlate with specific outcomes in incident HPV-negative head and neck squamous cell carcinoma : a retrospective cohort study. BMC Cancer 2022;22(1):243. doi: 10.1186/s12885-022-09327-4
  10. Velnar T., Bailey T., Smrkolj V. The wound healing process: an overview of the cellular and molecular mechanisms. J Int Med Res 2009;37(5):1528–42. doi: 10.1177/147323000903700531
  11. Schultz G.S., Wysocki A. Interactions between extracellular matrix and growth factors in wound healing. Wound Repair Regen 2009;17(2):153–62. doi: 10.1111/j.1524-475X.2009.00466.x
  12. Lobmann R., Schultz G., Lehnert H. Proteases and the diabetic foot syndrome: mechanisms and therapeutic implications. Diabetes Care 2005;28(2):461–71. doi: 10.2337/diacare.28.2.461
  13. Yamagata K., Fukuzawa S., Ishibashi-Kanno N. et al. Association between the C-reactive protein/albumin ratio and prognosis in patients with oral squamous cell carcinoma. Scientific Rep 2021;11(1):5446. doi: 10.1038/s41598-021-83362-2
  14. Gabrilovich D.G., Nagaraj S. Myeloid-derived suppressor cells as regulators of the immune system. Nat Rev Immunol 2009;9(3):162–74. doi: 10.1038/nri2506
  15. Li D., Wang Ch., Wei W. et al. Postoperative complications of free flap reconstruction in moderate-advanced head and neck squamous cell carcinoma: a prospective cohort study based on real-world data. Front Oncol 2022;12:792462. doi: 10.3389/fonc.2022.792462
  16. Lin P.C., Kuo P.J., Kuo S.Ch. et al. Risk factors associated with postoperative complications of free anterolateral thigh flap placement in patients with head and neck cancer: analysis of propensity score-matched cohorts. Microsurgery 2020;40(5):538–44. doi: 10.1002/micr.30587
  17. Spanier G., Böttcher J., Gerken M. et al. Prognostic. Value of perioperative red blood cell transfusion and anemia on survival and recurrence in oral squamous cell carcinoma. Oral Oncol 2020;107:104773. doi: 10.1016/j.oraloncology.2020.104773
  18. Giannoudis P.V., Smith M.R., Evans R.T. et al. Serum CRP and IL-6 levels after trauma: not predictive of septic complications in 31 patients. Acta Orthop Scand 1998;69(2):184–8. doi: 10.3109/17453679809117625
  19. Khandavilli S.D., Ceallaigh P.O., Lloyd C.J. et al. Serum C-reactive protein as a prognostic indicator in patients with oral squamous cell carcinoma. Oral Oncol 2009;45(10):912–4. doi: 10.1016/j.oraloncology.2009.03.015
  20. Kruse A.L., Luebbers H.T., Gratz K.W. C-reactive protein levels: a prognostic marker for patients with head and neck cancer? Head Neck Oncol 2010;2:21. doi: 10.1186/1758-3284-2-21
  21. Lee S., Kim D.W., Kwon S. Prognostic value of systemic inflammatory markers for oral cancer patients based on the 8th edition of AJCC staging system. Sci Rep 2020;10(1):12111. doi: 10.1038/s41598-020-68991-3
  22. Diao P., Wu Y., Li J. et al. Preoperative systemic immune-inflammation index predicts prognosis of patients with oral squamous cell carcinoma after curative resection. J Transl Med 2018;16:365. doi: 10.1186/s12967-018-1742-x
  23. Kao S.C., Pavlakis N., Harvie R. et al. High blood neutrophil-to-lymphocyte ratio is an indicator of poor prognosis in malignant mesothelioma patients undergoing systemic therapy. Clin Cancer Res 2010;16(23):5805–13. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-10-2245
  24. Ong H.S., Gokavarapu S., Wang L.Z. et al. Low pretreatment lymphocyte-monocyte ratio and high platelet-lymphocyte ratio indicate poor cancer outcome in early tongue cancer. J Oral Maxillofac Surg 2017;75(8):1762–74. doi: 10.1016/j.joms.2016.12.023
  25. Mattavelli D., Lombardi D., Missale F. et al. Prognostic nomograms in oral squamous cell carcinoma: The negative impact of low neutrophil to lymphocyte ratio. Front Oncol 2019;9:339. doi: 10.3389/fonc.2019.00339
  26. Liu X., Sun X., Liu J. et al. Preoperative C-reactive protein/albumin ratio predicts prognosis of patients afer curative resection for gastric cancer. Transl Oncol 2015;8(4):339–45. doi: 10.1016/j.tranon.2015.06.006
  27. Кутукова С.И., Беляк Н.П., Иваськова Ю.В. Прогностическая роль факторов системного воспаления в течении плоскоклеточного рака слизистой оболочки полости рта. Медицинский алфавит 2021;10:28–34. doi: 10.33667/2078-5631-2021-10-28-34
  28. Кутукова С.И., Беляк Н.П., Иваськова Ю.В. Системное воспаление в течении аденогенного рака слюнных желез. Ученые записки Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета имени академика И.П. Павлова 2022;29(3):74–80. doi: 10.24884/1607-4181-2022-29-3-74-80
  29. Kudou K., Saeki H., Nakashima Y. et al. C-reactive protein/albuminratio is a poor prognostic factor of esophagogastric junction and upper gastric cancer. J Gastroenterol Hepatol 2019;34(2): 355–63. doi: 10.1111/jgh.14442
  30. Crumley A.B.C., Stuart R.C., McKernan M. et al. Is hypoalbuminemia an independent prognostic factor in patients with gastric cancer? World J Surg 2010;34(10):2393–8. doi: 10.1007/s00268-010-0641-y
  31. Takebe J., Champagne C.M., Offenbacher Ishibashi S.K. et al. Titanium surface topography alters cell shape and modulates bone morphogenetic protein 2 expression in the J774A.1 macrophage cell line. J Biomed Mater Res Part A 2003;64(2):207–16. doi: 10.1002/jbm.a.10275
  32. Laschke M.W., Harder Y., Amon M. et al. Angiogenesis in tissue engineering: breathing life into constructed tissue substitutes. Tissue Eng 2006;12(8):2093–104. doi: 10.1089/ten.2006.12.2093
  33. Kuboki Y., Jin Q., Kikuchi M. et al. Geometry of artificial ECM: sizes of pores controlling phenotype expression in BMP-induced osteogenesis and chondrogenesis. Connect Tissue Res 2002; 43(2–3):529–34. doi: 10.1080/03008200290001104
  34. Wu G., Liu Y., Iizuka T. et al. The effect of a slow mode of BMP-2 delivery on the inflammatory response provoked by bone-defect-filling polymeric scaffolds. Biomaterials 2010;31(29):7485–93. doi: 10.1016/j.biomaterials.2010.06.037
  35. Suarato G., Bertorelli R., Athanassiou A. Borrowing from nature: biopolymers and biocomposites as smart wound care materials. Front Bioeng Biotechnol 2018;6:137. doi: 10.3389/fbioe.2018.00137
  36. Refai A.K., Textor M., Brunette D.M. et al. Effect of titanium surface topography on macrophage activation and secretion of proinflammatory cytokines and chemokines. J Biomed Mater Res A 2004;70(2):194–205. doi: 10.1002/jbm.a.30075
  37. Mendonça G., Mendonça D.B., Aragão F.J. et al. Advancing dental implant surface technology – from micron- to nanotopography. Biomaterials 2008;29(28):3822–35. doi: 10.1016/j.biomaterials.2008.05.012
  38. Ma Q.L., Zhao L.Z., Liu R.R. et al. Improved implant osseointegration of a nanostructured titanium surface via mediation of macrophage polarization. Biomaterials 2014;35(37):9853–67. doi: 10.1016/j.biomaterials.2014.08.025
  39. Paul N.E., Skazik C., Harwardt M. et al. Topographical control of human macrophages by a regularly microstructured polyvinylidene fluoride surface. Biomaterials 2008;29(30):4056–64. doi: 10.1016/j.biomaterials.2008.07.010
  40. Jones J.A., Chang D.T., Meyerson H. et al. Proteomic analysis and quantification of cytokines and chemokines from biomaterial surface-adherent macrophages and foreign body giant cells. Biomed Mater Res Part A 2007;83(3):585–96. doi: 10.1002/jbm.a.31221
  41. Yun J.K., DeFife K., Colton E. et al. Human monocyte/macrophage adhesion and cytokine production on surface-modified poly(tetrafluoroethylene/hexafluoropropylene) polymers with and without protein preadsorption. J Biomed Mater Res 1995;29(2):257–68. doi: 10.1002/jbm.820290217
  42. Mosser D.M., Edwards J.P. Exploring the full spectrum of macrophage activation. Nat Rev Immunol 2008;8:958–69. doi: 10.1038/nri2448
  43. Arnold L., Henry A., Poron F. et al. Inflammatory monocytes recruited after skeletal muscle injury switch into antiinflammatory macrophages to support myogenesis. J Exp Med 2007;204(5): 1057–69. URL: https://www.researchgate.net/publication/6344940_Inflammatory_monocytes_recruited_after_skeletal_muscle_injury_switch_into_antiinflammatory_macrophages_to_support_myogenesis
  44. Kim S.G. Immunomodulation for maxillofacial reconstructive surgery Kim Maxillofac Plast Reconstr Surg 2020;42(1):5. doi: 10.1186/s40902-020-00249-4

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© , 2023


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 36990 от  21.07.2009.