Preview

Опухоли головы и шеи

Расширенный поиск

Возможности магнитно-резонансной томографии в режиме SwI в дифференциальной диагностике глиом (g3–g4) и первичных лимфом головного мозга

https://doi.org/10.17650/2222-1468-2020-10-2-38-45

Полный текст:

Аннотация

Цель исследования – оценка возможностей магнитно-резонансной томографии (МРТ) в режиме SWI (susceptibility weighted imaging, изображения, взвешенные по магнитной восприимчивости) в дифференциальной диагностике глиом и первичных лимфом головного мозга.
Материалы и методы. Обследованы 54 пациента (27 (50 %) мужчин, 27 (50 %) женщин, средний возраст 57,9 года) с объемными образованиями головного мозга. При гистологическом исследовании операционного материала верифицированы опухоли глиальной природы у 41 пациента (глиобластомы – у 26, анапластические астроцитомы – у 15) и первичные лимфомы головного мозга у 13 пациентов. МРТ головного мозга проводили на томографах с индукцией магнитного поля 3 и 1,5 Тл. Проведена полуколичественная оценка данных МРТ в режиме SWI на основе наличия ITSS (intratumoral susceptibility signals, внутриопухолевые сигналы восприимчивости), отражающих выраженность нарушений внутритканевой сосудистой архитектоники и наличие микрокровоизлияний.
Результаты. Изменения, соответствующие ITSS 3, в глиобластомах (G4 ) выявлены во всех 26 (100 %) случаях, в структуре глиом (G3 ) в 3 (20 %) наблюдениях выявлены изменения, соответствующие ITSS 3, в остальных 12 (80 %) случаях – ITSS 2. В структуре лимфом головного мозга изменения, соответствующие ITSS 1, обнаружены в 4 (30,7 %) случаях, ITSS 0 – в 9 (69,3 %).
Заключение. МРТ в режиме SWI представляется перспективным методом количественной оценки патологических изменений опухолевой сосудистой архитектоники и интратуморальных кровоизлияний благодаря высокой специфичности в дифференциальной диагностике злокачественных глиом и лимфом головного мозга, активно накапливающих контрастное вещество.

Об авторах

Д. В. Сашин
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

Денис Вячеславович Сашин

115478 Москва, Каширское шоссе, 24



М. Б. Долгушин
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


Е. А. Кобякова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


А. Х. Бекяшев
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


А. С. Субботин
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


Э. А. Нечипай
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


Д. С. Романов
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


Н. А. Козлов
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия
115478 Москва, Каширское шоссе, 24


Список литературы

1. Никифоров Б.М., Мацко Д.Е. Опухоли головного мозга. СПб.: Питер, 2013. 320 с. [Nikiforov B.M., Matsko D.E. Brain tumors. Saint Petersburg: Piter, 2013. 320 p. (In Russ.)].

2. Волошин С.В., Криволапов Ю.А., Шуваев В.А. и др. Первичная диффузная В-клеточная крупноклеточная лимфома центральной нервной системы: современные представления о патогенезе, диагностике и принципах лечения. Вестник гематологии 2011;7(3):22–34. [Voloshin S.V., Krivolapov Yu.A., Shuvaev V.A. et al. Primary B-cell lymphoma of the central nervous system (PCLCS): modern concepts about pathogenesis, diagnostic and treatment. Vestnik gematologii = Messenger of hematology 2011;7(3):22–34. (In Russ.)].

3. Ding Y., Xing Z., Liu B. et al. Differentiation of primary central nervous system lymphoma from high-grade glioma and brain metastases using susceptibility-weighted imaging. Brain Behav 2014;4(6):841–9. DOI: 10.1002/brb3.288.

4. Dulak J., Józkowicz A. Anti-angiogenic and anti-inflammatory effects of statins: relevance to anti-cancer therapy. Curr Cancer Drug Targets 2005;5(8):579–94. DOI: 10.2174/156800905774932824.

5. Salven P., Teerenhovi L., Joensuu H. A high pretreatment serum vascular endothelial growth factor concentration is associated with poor outcome in non-Hodgkin’s lymphoma. Blood 1997;90(8):3167–72.

6. Rubenstein J., Fischbein N., Aldape K. et al. Hemorrhage and VEGF expression in a case of primary CNS lymphoma. J Neurooncol 2002;58(1):53–6. DOI: 10.1023/a:1015887312455.

7. Peters S., Knöß N., Wodarg F. et al. Glioblastomas vs. lymphomas: More diagnostic certainty by using susceptibility-weighted imaging (SWI). Rofo 2012;184:713–8. DOI: 10.1055/s-0032-1312862.

8. Takeushi H., Matsuda K., Kitai R. et al. Angiogenesis in primary central nervous system lymphoma. J Neurooncol 2007;84(2):141–5. DOI: 10.1007/s11060-007-9363-x.

9. Gasparotti R., Pinelli L., Liserre R. New MR sequences in daily practice: susceptibility weighted imaging. A pictorial essay. Insights Imaging 2011;2(3):335–47. DOI: 10.1007/s13244-011-0086-3.

10. Heymans S., Luttun A., Nuyens D. et al. Inhibition of plasminogen activators or matrix metalloproteinases prevents cardiac rupture but impairs therapeutic angiogenesis and causes cardiac failure. Nat Med 1999;5(10):1135–42. DOI: 10.1038/13459.

11. Mittal S., Wu Z., Neelavalli J., Haacke E.M. Susceptibility-weighted imaging: technical aspects and clinical applications, part 2. AJNR Am J Neuroradiol 2009;30(2):232–52. DOI: 10.3174/ajnr.A1461.

12. Park S.M., Kim H.S., Jahng G.H. et al. Combination of high-resolution susceptibility-weighted imaging and the apparent diffusion coefficient: Added value to brain tumour imaging and clinical feasibility of non-contrast MRI at 3 T. Br J Radiol 2010;83(990):466–75. DOI: 10.1259/bjr/34304111.

13. Lee B.C., Vo K.D., Kido D.K. et al. MR high-resolution blood oxygenation level-dependent venography of occult (low-flow) vascular lesions. AJNR Am J Neuroradiol 1999;20(7):1239–42.

14. Akter M., Hirai T., Hiai Y.et al. Detection of hemorrhagic hypointense foci in the brain on susceptibility-weighted imaging clinical and phantom studies. Acad Radiol 2007;14(9):1011–9. DOI: 10.1016/j.acra.2007.05.013.

15. Goos J.D.C., van der Flier W.M., Knol D.L. et al. Clinical relevance of improved microbleed detection by susceptibilityweighted magnetic resonance imaging. Stroke J Cereb Circ 2011;42(7):1894–900. DOI: 10.1161/STROKEAHA.110.599837.

16. Guo L.F., Wang G., Zhu X.Y. et al. Comparison of ESWAN, SWI-SPGR, and 2D T2*-weighted GRE sequence or depicting cerebral microbleeds. Clin Neuroradiol 2013;23(2):121–7. DOI: 10.1007/s00062-012-0185-7.

17. Cheng A.L., Batool S., McCreary C.R. et al. Susceptibility-weighted imaging is more reliable than T2*-weighted gradient-recalled echo MRI for detecting microbleeds. Stroke J Cereb Circ 2013;44(10): 2782–6. DOI: 10.1161/STROKEAHA.113.002267.

18. Shams S., Martola J., Cavallin L. et al. SWI or T2*: which MRI sequence to use in the detection of cerebral microbleeds? AJNR Am J Neuroradiol 2015;36(6): 1089–95. DOI: 10.3174/ajnr.A4248.

19. Park M.J. Kim H.S., Jahng G.H. et al. Semiquantitative assessment of intratumoral susceptibility signals using non-contrastenhanced high-field high-resolution susceptibility-weighted imaging in patients with gliomas: comparison with MR perfusion imaging. AJNR Am J Neuroradiol 2009; 30(7):1402–8. DOI: 10.3174/ajnr.A1593.

20. Radbruch A. Differentiation of glioblastoma and primary CNS lymphomas using susceptibility weighted imaging, Eur J Radiol 2013;82:552–6. DOI: 10.1016/j.ejrad.2012.11.002.

21. Aydin O., Buyukkaya R, Hakyemez B. Susceptibility imaging in glial tumor grading; using 3 Tesla magnetic resonance(MR) system and 32 channel head coil. Pol J Radiol 2017;1(82):179–87. DOI: 10.12659/PJR.900374.

22. Kickingereder P., Wiestler B., Sahm F. et al. Primary central nervous system lymphoma and atypical glioblastoma: multiparametric differentiation by using diffusion-, perfusion-, and susceptibilityweighted MR imaging. Neuroradiol 2014;272(3):843–50. DOI: 10.1148/radiol.14132740.

23. Folkman J. Tumour angiogenesis. In: Cancer Medicine. Ontario: Decker, 2000. Pp. 132–152. DOI: 10.3322/canjclin.22.4.226.

24. Бывальцев В.А., Степанов И.А., Белых Е.Г.. Яруллина А.И. Молекулярные аспекты ангиогенеза в глиобластомах головного мозга. Вопросы онкологии 2017;63(1):19–27. [Byvaltsev V.A., Stepanov I.A., Belykh E.G., Yarullina A.I. Molecular aspects of angiogenesis in glioblastomas of the brain. Voprosy onkologii = Oncology Issues 2017;63(1):19–27. (In Russ.)].

25. Eiken H.M., Adams R.M. Dynamics of endothelial cell behaviour in sprouting angiogenesis. Curr Opin Cell Biol 2010;22(5):617–25. DOI: 10.1016/j.ceb.2010.08.010.

26. Feige J.J. Tumour angiogenesis: recent progress and remaining challenges. Bull Cancer 2010;97(11):1305–10. DOI: 10.1684/bdc.2010.1208.

27. Fischer I., Gagner J.-P., Law M. et al. Angiogenesis in gliomas. Biol Mol Pathophys Brain Pathol 2005;15:297–310. DOI: 10.1111/j.1750-3639.2005.tb00115.x.

28. Storkebaum E., Lambrechts D., Carmeliet P. VEGF: once regarded as a specific angiogenic factor, now implicated in neuroprotection. BioEssays 2004; 26:943–54. DOI: 10.1002/bies.20092.

29. Jin K., Zhu Y., Sun Y. Vascular endothelial growth factor (VEGF) stimulates neurogenesis in vitro and in vivo. Proc Natl Acad Sci USA 2002;99(18):1946–50. DOI: 10.1073/pnas.182296499.

30. Li C., Ai B., Li Y. et al. Susceptibilityweighted imaging in grading brain astrocytomas. Eur J Radiol 2010;75(1):81–5. DOI: 10.1016/j.ejrad.2009.08.003.

31. Weiye L., Baoyin G., Jiecheng Y. Vasorin stimulates malignant progression and angiogenesis in glioma. Cancer Sci 2019;110(8): 2558–72. DOI: 10.1111/cas.14103.

32. Jain R.K., di Tomaso E., Dan G.D. et al. Angiogenesis in brain tumours. Nat Rev Neurosci 2007;(8):610–22. DOI: 10.1038/nrn2175.

33. Paulus W. Classification, pathogenesis and molecular pathology of primary CNS lymphomas. J Neurooncol 1999;43(3):203–8. DOI: 10.1023/a:1006242116122.

34. Gloger M., Menzel L., Grau M. et al. Lymphoma angiogenesis is orchestrated by noncanonical signaling pathways. Canc Res 2020;80(6):1316–29. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-19-1493.


Для цитирования:


Сашин Д.В., Долгушин М.Б., Кобякова Е.А., Бекяшев А.Х., Субботин А.С., Нечипай Э.А., Романов Д.С., Козлов Н.А. Возможности магнитно-резонансной томографии в режиме SwI в дифференциальной диагностике глиом (g3–g4) и первичных лимфом головного мозга. Опухоли головы и шеи. 2020;10(2):38-45. https://doi.org/10.17650/2222-1468-2020-10-2-38-45

For citation:


Sashin D.V., Dolgushin M.B., Kobyakova E.A., Bekyashev A.K., Subbotin A.S., Nechipay E.A., Romanov D.S., Kozlov N.A. Possibilities of magnetic resonance imaging in SWI mode in differential diagnosis of brain gliomas (G3–G4) and primary lymphomas. Head and Neck Tumors (HNT). 2020;10(2):38-45. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/2222-1468-2020-10-2-38-45

Просмотров: 77


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2222-1468 (Print)
ISSN 2411-4634 (Online)